MARC

 008240612s2021      us  |||||||||||||||c||eng  d
■001000016931952
■00520240214100352
■006m          o    d                
■007cr#unu||||||||
■020    ▼a9798379651305
■035    ▼a(MiAaPQ)AAI30462669
■035    ▼a(MiAaPQ)STANFORDdw070rz3676
■040    ▼aMiAaPQ▼cMiAaPQ
■0820  ▼a631.4
■1001  ▼aBaltsavias,  Spyridon  Gerasimos.
■24510▼aIn  Vivo  Gut  Microbiome  Sensors▼h[electronic  resource]
■260    ▼a[S.l.]:▼bStanford  University.  ▼c2021
■260  1▼aAnn  Arbor  :▼bProQuest  Dissertations  &  Theses,  ▼c2021
■300    ▼a1  online  resource(129  p.)
■500    ▼aSource:  Dissertations  Abstracts  International,  Volume:  84-12,  Section:  B.
■500    ▼aAdvisor:  Khuri-Yakub,  Butrus  T.;Soh,  H.  Tom.
■5021  ▼aThesis  (Ph.D.)--Stanford  University,  2021.
■506    ▼aThis  item  must  not  be  sold  to  any  third  party  vendors.
■520    ▼aThe  human  large  intestine  harbors  trillions  of  microbes  that  interact  with  one  another  and  the  host.  In  the  last  few  decades,  a  perturbed  gut  microbial  composition  ("microbiome")  has  been  linked  with  multiple  disease  processes  ranging  from  autoimmune  to  neurodegenerative  disorders.  Different  microbiomes  produce  different  chemical  environments  in  the  intestine,  but  understanding  how  these  chemical  environments  impact  host  physiology  and  health  is  one  of  the  grand  challenges  of  this  nascent  field.  An  emerging  hypothesis  is  that  disease-associated  microbiomes  share  a  common  feature:  a  higher  level  of  environmental  oxidation.  Unfortunately,  testing  this  oxidation  hypothesis  directly  is  currently  impossible,  because  no  in  vivo  redox  sensors  exist  for  research  animals  (e.g.  mice  and  rats).  In  this  work,  we  propose  sensors  that  measure  oxidation-reduction  potential  (ORP)  in  the  rodent  gut.  We  first  motivate  the  need  for  in  vivo  gut  ORP  data  with  high  spatial  and  temporal  resolution,  through  new  ex  vivo  and  in  situ}  measurements.  We  then  present  the  design  of  wireless  sensors  that  can  collect  such  data  and  enable  gut  microbiome  studies  during  dietary,  microbial,  and  genetic  manipulation.  Sensor  features  including  wireless  power-up/wake-up  through  ultrasonic  waves  and  data  communication  through  galvanic  coupling  allow  for  sensor  miniaturization,  experiment  flexibility,  and  measurement  robustness.  To  demonstrate  these  features,  we  implant  the  sensors  in  rat  ceca  and  perform  the  first  12-day  in  vivo  gut  ORP  measurement.  The  presented  gut  microbiome  sensing  platform  paves  the  way  for  experimental  testing  of  biological  hypotheses,  offering  new  opportunities  for  understanding  redox  pathophysiology  mechanisms,  and  facilitating  translation  to  disease  diagnosis  and  treatment  applications.
■590    ▼aSchool  code:  0212.
■650  4▼aSoil  sciences.
■650  4▼aFeces.
■650  4▼aElectrodes.
■650  4▼aOxidation.
■650  4▼aAntibiotics.
■650  4▼aSensors.
■650  4▼aBacteria.
■650  4▼aTransmitters.
■650  4▼aElectronics.
■650  4▼aUltrasonic  imaging.
■650  4▼aMedical  imaging.
■650  4▼aPharmaceutical  sciences.
■690    ▼a0481
■690    ▼a0574
■690    ▼a0572
■71020▼aStanford  University.
■7730  ▼tDissertations  Abstracts  International▼g84-12B.
■773    ▼tDissertation  Abstract  International
■790    ▼a0212
■791    ▼aPh.D.
■792    ▼a2021
■793    ▼aEnglish
■85640▼uhttp://www.riss.kr/pdu/ddodLink.do?id=T16931952▼nKERIS▼z이  자료의  원문은  한국교육학술정보원에서  제공합니다.
■980    ▼a202402▼f2024

미리보기

내보내기

chatGPT토론

Ai 추천 관련 도서