MARC

 008250123s2024        us                              c    eng  d
■001000017161807
■00520250211151448
■006m          o    d                
■007cr#unu||||||||
■020    ▼a9798382785851
■035    ▼a(MiAaPQ)AAI31296575
■040    ▼aMiAaPQ▼cMiAaPQ
■0820  ▼a610
■1001  ▼aKeepseagle,  Kayla  E.▼0(orcid)0009-0007-3363-4236
■24510▼aMicrofluidic  Technologies  to  Advance  Antibody  and  Bacteriophage  Discovery
■260    ▼a[Sl]▼bHarvard  University▼c2024
■260  1▼aAnn  Arbor▼bProQuest  Dissertations  &  Theses▼c2024
■300    ▼a209  p
■500    ▼aSource:  Dissertations  Abstracts  International,  Volume:  85-12,  Section:  B.
■500    ▼aAdvisor:  Weitz,  David  A.
■5021  ▼aThesis  (Ph.D.)--Harvard  University,  2024.
■520    ▼aThis  dissertation  introduces  a  pioneering  approach  to  antibody  discovery  that  harnesses  the  power  of  advanced  microfluidic  technology.  Our  innovative  methodology  revolves  around  the  isolation  of  singular  antibody-producing  B-cells,  a  feat  accomplished  through  the  encapsulation  of  individual  B-cells  and  an  oligo-dT  gel  within  microdroplets.  This  cutting-edge  technique  enables  the  targeted  capture  of  a  single  type  of  antibody,  thereby  streamlining  the  discovery  process.  Leveraging  microfluidic  systems,  we  have  meticulously  designed  a  microenvironment  conducive  to  encapsulating  a  solitary  B-cell  alongside  the  oligo-dT  gel.  The  microdroplets  function  as  miniature  reaction  vessels,  providing  an  isolated  setting  for  antibody  synthesis  and  capture.  This  microscale  strategy  not  only  enhances  efficiency  but  also  minimizes  sample  requirements.  Furthermore,  we  have  employed  state-of-the-art  DNA  sequencing  techniques  to  meticulously  analyze  and  characterize  the  antibody  library  resulting  from  our  microfluidic-assisted  capture.  The  comprehensive  DNA  sequencing  results  have  furnished  invaluable  insights  into  the  diversity  and  specificity  of  the  isolated  antibodies.  The  pivotal  findings  of  this  research  underscore  the  potential  of  our  microfluidic-assisted  method  for  expeditious  and  precise  antibody  discovery.  By  capturing  antibodies  at  the  single  B-cell  level,  we  have  ushered  in  a  new  era  of  possibilities  for  generating  targeted  and  highly  specific  antibodies.  This  work  serves  as  a  significant  contribution  to  the  advancement  of  antibody  engineering  and  lays  the  groundwork  for  the  development  of  therapeutic  agents  boasting  enhanced  efficacy  and  precision.This  research  explores  an  innovative  system  for  phage  therapy  leveraging  microfluidics  to  revolutionize  the  precision  and  efficacy  of  bacterial  infection  treatment.  Through  a  startup  experiment,  we  designed  a  microfluidic  platform  where  bacterial  cells  were  encapsulated  in  microdroplets,  each  serving  as  an  independent  microenvironment  for  targeted  phage  therapy.  Confocal  microscopy  was  employed  to  visualize  and  analyze  the  dynamic  interactions  within  these  microdroplets.  Bacterial  cells  were  introduced  into  microdroplets,  creating  a  controlled  environment  where  some  droplets  contained  bacteriophages,  while  others  did  not.  This  experimental  design  facilitated  real-time  observation  and  quantification  of  the  impact  of  phage  therapy  at  the  microscale.  The  use  of  microfluidics  allowed  for  the  encapsulation  of  individual  bacterial  cells,  providing  a  unique  perspective  on  the  dynamics  of  phage-bacterium  interactions.  The  success  of  this  experimental  setup  demonstrates  the  potential  of  microfluidics  in  advancing  phage  therapy  precision.  The  targeted  nature  of  phage  therapy,  observed  and  quantified  at  the  microscale,  opens  avenues  for  developing  tailored  and  responsive  treatments  for  bacterial  infections.  These  findings  underscore  the  transformative  potential  of  microfluidic-enabled  phage  therapy  in  addressing  antibiotic  resistance  challenges  and  enhancing  treatment  precision.  The  promising  outcomes  of  this  startup  experiment  pave  the  way  for  further  exploration  and  refinement  of  microfluidic-assisted  phage  therapy.  Future  research  endeavors  may  focus  on  scaling  up  the  system,  optimizing  parameters  for  broader  applications,  and  exploring  the  clinical  translatability  of  this  precision  medicine  approach.
■590    ▼aSchool  code:  0084.
■650  4▼aBioengineering
■650  4▼aCellular  biology
■650  4▼aMolecular  biology
■653    ▼aAntibody
■653    ▼aBacteriophage
■653    ▼aDNA  sequencing
■653    ▼aMicrofluidics
■653    ▼aPhage-bacterium  interactions
■690    ▼a0202
■690    ▼a0379
■690    ▼a0307
■71020▼aHarvard  University▼bEngineering  and  Applied  Sciences  -  Engineering  Sciences.
■7730  ▼tDissertations  Abstracts  International▼g85-12B.
■790    ▼a0084
■791    ▼aPh.D.
■792    ▼a2024
■793    ▼aEnglish
■85640▼uhttp://www.riss.kr/pdu/ddodLink.do?id=T17161807▼nKERIS▼z이  자료의  원문은  한국교육학술정보원에서  제공합니다.

Preview

Export

ChatGPT Discussion

AI Recommended Related Books